实验计划及进展

试验试剂

BTS稀释液、PI、H42、CM-H2DCFDA

常规指标

活性、密度、活率、运动参数、顶体完整性、质膜完整性

精子 氧化及抗氧化

MDA丙二醛、ROS、TOS总氧化状态、T-AOC总抗氧化能力、SOD超氧化物歧化酶、CAT过氧化氢酶、GSH-Px谷胱甘肽过氧化物酶

线粒体

JC-1线粒体膜电位、MTROS线粒体超氧化物

其他

凋亡水平、超微结构、ATP水平、LDH乳酸脱氢酶、DNA碎片化水平


2025/3 第一次试验 观察药物效果

祥欣铜川公猪站 任站长13488006000

2025/3/3发货,快递时效1 d,预计收货时为采集后第1 d。

组别及检测指标见下表,于保存第1/3/5/7 d各检测一次,最后测定活力低于0.6的时间。每组设置3个重复。

BLPs浓度组别 密度 活率 活力 运动参数 质膜完整性 顶体完整性 最长保存时间
0 mg/L
10 mg/L
20 mg/L
40 mg/L
60 mg/L
80 mg/L
1.精液保存

BTS 精液稀释液:37.15 g葡萄糖,6.0 g柠檬酸钠,1.25 g碳酸氢钠,1.25 g乙 二胺四乙酸钠,0.75 g氯化钾,pH值调节到7.2,定容至1 L,滤菌膜过滤,4℃冰箱保存,最好现配现用。如需添加抗生素,青霉素0.6 g、链霉素1 g。

(2400 g,3 min,17℃离心后以稀释液重悬)

5 mL离心管分装,每份1.5 mL。加入BLPs。组化间17℃温箱,毛巾包裹保存。

保存期间每12 h上下翻动一次

2.CASA检测

准备工作:载玻片盖玻片(走廊冰箱)、浮漂(温箱下面抽屉)、枪和枪头(柜子下层有空盒子,现装)、离心管、管架

预热水浴锅及加热板

样品倾斜摇匀后,离心管中部取100 μL加入1.5 mL离心管,浮漂固定,37℃水浴5 min

预热载玻片、盖玻片

取5/8/10 μL精液,一个载玻片可加两份样。盖玻片后静置约1 min,检测各项指标,截屏保存(活力不对可重新加热再测)

3.质膜完整性检测

低渗液提前置于4℃冰箱复温

2 mL离心管中加入1 mL低渗液,37℃水浴预热5 min

加入0.1 mL样品,上下混匀,37℃水浴孵育30-60 min

CASA检测

如低渗液效果不明显,可改用清水并缩短处理时间

4.顶体完整性检测

配置FITC-PNA染液:染料使用前先37℃复温10 min,之后离心吸取上清(降低非特异性背景染色)。推荐浓度5-20 μg/mL。文献中最大浓度200 μg/mL

取30 μL精液于粘附载玻片上,盖玻片推匀,自然风干

无水甲醇固定10 min,自然风干

滴加30 μL FITC-PNA染液,37℃避光孵育30 min,PBS洗

滴加30 μL DAPI染液,室温避光孵育10 min,PBS洗

封片,观察拍照


25/3/4 精液稀释及分装

12:00 调整温箱温度

15:00 取到样品,30 mL未稀释原精,17℃温箱保存

取10 μL滴于玻片组化间显微镜镜检,低倍镜下见密集精子,高倍镜模糊,赶时间未继续观察

配置稀释液:37.15 g葡萄糖,6.0 g柠檬酸钠,1.25 g碳酸氢钠,1.25 g乙 二胺四乙酸钠,0.75 g氯化钾,0.6 g青霉素钠,1.0 g硫酸链霉素,双蒸水充分溶解,定容至1 L

取0.1 g BLPs,以10 mL稀释液溶解,配置为10 g/L=10 μg/μL BLPs

取5 mL精液x2,置于两个50 mL离心管中;取约100 mL稀释液于烧杯中

37℃水浴加热10 min,保证精液和稀释液温差小于1℃

将稀释液缓慢加入精液中,先1:1稀释,颠倒混匀,然后再加入稀释液至两管稀释比例分别为1:4和1:9

取1:9的稀释精液,每8 mL分装1管总计6管,实验组加入8/16/32/48/64 μL BLPs,上下颠倒混匀

全部样品置于17℃温箱,稀释液及BLPs置于4℃冰箱保存


实验操作

细胞复苏

基础培养基、血清、三抗、50 mL/5 mL离心管、培养皿、细胞

预热水浴锅至37℃,同时融化基础培养基、血清、三抗

45:5:1配制50 mL完全培养基,取2 mL于5 mL离心管中,4 mL于小皿

从液氮罐中取出细胞,37℃水浴并摇晃至剩少量冰块

取细胞加至5 mL离心管中重悬,1000 r离心5 min后加入小皿中混匀